前言
上期我們進行了免疫熒光原理、實驗步驟的探討,本期我們一起走進免疫熒光常見問題的分析,幫助大家解決在實驗過程中遇到的一些問題,讓大家都能成為免疫熒光小能手。
常見問題
1背景熒光高
① 洗滌不足——充分洗滌,適當增加洗滌次數和時間;
② 樣本干燥——在濕盒中孵育抗體,避免干燥;
③ 抗體濃度過高——預實驗測定最佳濃度;
④ 樣本自發熒光——染色前先行檢測自發熒光情況;
⑤ 封閉不充分——延長封閉時間或更換封閉液;
⑥ 二抗非特異性結合——做一組只加二抗孵育的作為對照;
⑦ 抗體孵育時間過長——嚴格控制孵育時間,適當減少孵育時間;
⑧ 切片在緩沖液或修復液中浸泡時間太長(大于24小時)——有時切片脫蠟至修復會過夜,第二天加抗體進行染色,如果將裝有切片和修復液的容器放在4oC冰箱過夜,對結果無明顯影響,如果放在室溫,特別是炎熱的夏天,會出現背景著色,因此,不可存放時間太長;
⑨ 熒光背景噪音大——更換熒光顯微鏡,使用能夠降低背景熒光干擾的顯微鏡。
2熒光信號弱
① 熒光通道的激發波長和發射波長與染料不匹配——確保使用的顯微鏡的熒光通道與染料熒光基團的波長相匹配;
② 一抗或二抗不兼容——注意種屬是否正確;
③ 一抗不好用——陽性對照確認抗體有效性;
④ 固定過度或不充分——適當調整固定時間;
⑤ 樣本保存不當導致熒光淬滅——注意保存過程中的濕度和避光;
⑥ 一抗變質或質量差的多克隆抗體——注意抗體有效期,與新買抗體或用過的抗體作比較;
⑦ 信號弱或無信號——可裂解細胞后,用WB驗證目標蛋白在細胞中是否表達;
⑧ 顯微鏡收集熒光和成像的能力差——選擇一款相機配置好、熒光收集能力強、成像效果好的熒光顯微鏡。
3細胞/組織形態被破壞
① 組織從玻片上脫落或有氣泡——適當增加固定時間,封片時注意不要產生氣泡;
② 細胞或組織固定不充分,自發裂解——使用交聯性固定劑,適當增加固定時間;
③ 組織切片撕裂或有褶皺——切片過程導致的問題,考慮重新進行切片。
4定位不對
可使用帶明場通道的熒光顯微鏡進行共定位,如下圖:
① 細胞核干擾——細胞核位置前面的細胞質染色干擾造成,可以降低抗體濃度或孵育時間;
② 細胞或者組織狀態不對——細胞或者組織狀態不同導致目的蛋白細胞定位不同,造成最后的定位不對,可重新培養細胞調整好狀態或者重新取材,進行再次染色;
③ 核定位不對——可將封閉和打孔合為一步,即在封閉液中添加0.5% TRITON-100,37℃封閉2h,加一抗后最好4℃孵育過夜(16h);
④ 不確定觀察到的是不是需要的染色位置——使用帶明場通道的熒光顯微鏡,進行熒光定位,確定觀察到的染色位置是否正確。
對照實驗設置
1內源性組織背景對照
某些含有固有的生物化學性質的組織或細胞,會產生背景或自發熒光,對結果產生影響。以下圖為例,DAPI染核,FITC染邊界和中間的晶狀結構,而TRITC染整個組織背景的顏色,但綠色也產生了背景熒光,對三通道疊加造成了干擾。
2陰性對照
使用確定不含有待測抗原的細胞或組織,與待測樣本統一處理,同一觀察,結果若為陰性,可排除染色過程中由于非特異性染色造成的假陽性。
3陽性對照
與陰性對照相反,用確定含有待測抗原的細胞或組織,與待測樣本統一處理,同一觀察,結果若為陽性,可證明待測抗原具有活性且實驗過程沒有問題,方法操作可靠。
免疫熒光高清成像
在精心完成免疫熒光后,選擇一款操作簡單、成像清晰、效果卓越的熒光顯微鏡進行觀察拍照,才能輕松得到更為理想的結果圖,達到事半功倍的效果。
Echo Revolve正倒置一體熒光顯微鏡作為一款電動化、智能化的顯微鏡,具有以下優勢:
? 正倒置一體快速切換——切片、細胞觀察隨心切換,無懼任何耗材;
? DHR數字降噪功能——極大地降低了背景噪音和熒光干擾,提高圖像銳度,加深細節,得到分辨率更高的圖片;
? 強大的Z-Stacking功能——通過高精度電動化Z軸層掃來擴大景深,解決厚樣本觀察問題,提高圖像分辨率;
? 500MP單色相機——能夠采集更多熒光信號,助力低熒光強度樣本觀察;
? 多通道熒光自動拍攝疊加功能——可自動進行多通道成像的疊加,個性化選擇查看/保存各通道的組合圖像。